O Exame
CUBA2 - CULTURA - BAAR - 2ª AMOSTRA
SINÔNIMOS: CULTURA DE BAAR, CULTURA DE BK, CULTURA PARA TUBERCULOSE, CULTURA PARA MYCOBACTERIUM
CBHPM: 40310159 CID10: A15
Cobertura
Produção do Exame
Produção do exame
MATERIAL
DIVERSOS 2ª AMOSTRA
MEIO(S) DE COLETA
Frasco estéril
PRAZO
45 dias úteis
REALIZAÇÃO
Segunda a sábado
VOLUME MÍNIMO
Líquidos: 5 a 10 mL. Não líquidos: não aplicável
Método
MÉTODO
PETROFF (NAOH) + MEIO DE LOWENSTEIN JENSEN
Instruções
Instruções
Data revisão: 01/01/1900 00:00:00
ASPIRADO OU LAVADO GÁSTRICO
Instruções de preparo
Preparo Aspirado ou Lavado Gástrico CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.

Instruções de coleta
Coleta Aspirado ou Lavado Gástrico CUBAR:
Coletar pela manhã em jejum enquanto o paciente ainda está na cama. Realizar a lavagem com 25-50mL de água destilada estéril morna. É indicado para crianças pois em geral elas deglutem o escarro.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
 

Instruções  adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
 

ESCARRO
Instruções de preparo
Preparo Escarro CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.

Instruções de coleta
Coleta Escarro CUBAR:
Colher, preferencialmente, a primeira amostra da manhã. Orientar o paciente a enxaguar previamente a boca com água, várias vezes, para remover a flora bacteriana superficial dessa região e colher a amostra obtida após tosse profunda, diretamente em frasco de boca larga com tampa de rosca.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 48 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
 

Instruções  adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
 

ESCARRO INDUZIDO
Instruções de preparo
Preparo Escarro Induzido CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.

Instruções de coleta
Coleta Escarro Induzido CUBAR:
A coleta deve ser feita em frasco estéril com tampa de rosca, após a realização de nebulização da boca com solução salina hipertônica a 3% durante no mínimo 5 e no máximo 20 minutos. Essa técnica fluidifica a secreção do pulmão e provoca uma irritação que leva à tosse e facilita a expulsão do escarro. O procedimento deve ser acompanhado por profissional treinado e em unidade de saúde equipada.
Informar no frasco que o escarro foi coletado por esse método, porque seu aspecto é salivar. 

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 48 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
 

Instruções  adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
 

FEZES
Instruções de preparo
Preparo Fezes CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.

Instruções de coleta
Coleta Fezes CUBAR:
Coletar no mínimo 1g em frasco estéril sem conservante ou diluente.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
 

Instruções  adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
 

FRAGMENTOS DE TECIDO, BIÓPSIAS
Instruções de preparo
Preparo Fragmento de Tecido, Biópsias CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.

Instruções de coleta
Coleta Fragmento de Tecido, Biópsias CUBAR:
Quando houver lesão ou tecido necrosado, realizar o desbridamento da lesão. Deve-se colher um fragmento profundo (em torno de 1 cm²) e a amostra deve ser enviada ao laboratório em frasco estéril sem aditivos. Caso seja necessário umidificar a amostra, utilizar solução fisiológica 0,9%.
A proporção ideal é de 1 gota de solução para cada cm², apenas para garantir a umidade da amostra, a propiciando melhores resultados.
Não é indicado que a amostra seja submersa em solução salina, pois pode ocorrer a diluição e consequentemente resultados falsos negativos. Não utilizar formol.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
 

Instruções  adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
 

LAVADO BRONCOALVEOLAR
Instruções de preparo
Preparo Lavado Broncoalveolar CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.

Instruções de coleta
Coleta Lavado Broncoalveolar CUBAR:
Colocar a amostra em frasco estéril, após a realização  da broncoscopia.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
 

Instruções  adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
 

LÍQUIDOS ORGÂNICOS
Instruções de preparo
Preparo Líquidos Orgânicos CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.

Instruções de coleta
Coleta Líquidos Orgânicos CUBAR:
As amostras de líquidos orgânicos devem ser coletadas em frascos estéreis em um volume mínimo de 2mL.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
 

Instruções  adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
 

LÍQUOR
Instruções de preparo
Preparo Líquor CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.

Instruções de coleta
Coleta Líquor CUBAR:
Amostra coletada através de procedimento médico. Realizar coleta utilizando material e meio de coleta adequados e acondicionar corretamente. O ideal é que seja coletado 5mL de líquor, com um volume mínimo de 2mL, destinado especificamente para pesquisa e cultura de micobactérias (volumes menores comprometem a sensibilidade da baciloscopia, pois as amostras de líquor são paucibacilares).

Instruções de distribuição
Transportar em temperatura ambiente.
 

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas em temperatura ambiente.
 

Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
 

Instruções  adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
 

MEDULA ÓSSEA
Instruções de preparo
Preparo Medula Óssea CUBAR:
Jejum: De acordo com  a orientação médica.
Medicação: De acordo com a orientação médica.
Todas as amostras devem vir em frasco estéril com conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos. Cadastrar exame de acordo com a sequência da coleta da amostra (exemplo: 1ª amostra - CUBA1; 2ª amostra - CUBA2; 3ª amostra - CUBA3, 4ª amostra - CUBA4 e 5ª amostra CUBA5).

Instruções de coleta
Coleta Medula Óssea CUBAR:
O aspirado medular deve ser preferencialmente inoculado em frasco de hemocultura automatizado e específico para micobactérias. Na ausência do frasco específico para micobactérias, pode-se utilizar um frasco de hemocultura automatizado aeróbico ou um frasco estéril contendo o anticoagulante SPS ( sodium polyanethol sulfonate). Não utilizar EDTA.

Instruções de distribuição
Transportar em temperatura ambiente.
 

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas em temperatura ambiente.
 

Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
 

Instruções  adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
 

SANGUE
Instruções de preparo
Preparo Sangue CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.

Instruções de coleta
Coleta Sangue CUBAR:
Coletar em frasco de hemocultura específico para cultura de micobactérias seguindo o volume recomendado pelo fabricante.

Instruções de distribuição
Transportar em temperatura ambiente.
 

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas em temperatura ambiente.
 

Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
 

Instruções  adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
 

SECREÇÕES, ASPIRADO DE GÂNGLIOS
Instruções de preparo
Preparo Aspirado ou Lavado Gástrico CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.

Instruções de coleta
Coletar com seringa e agulha e transferir para o frasco estéril ou enviar na seringa sem agulha com ponta vedada.
 

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
 

Instruções  adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
 

URINA AMOSTRA ISOLADA
Instruções de preparo
Preparo Urina Amostra Isolada CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.

Instruções de coleta
Coleta Urina Amostra Isolada CUBAR:
Coletar em frasco apropriado preferencialmente a primeira urina da manhã ou com intervalo mínimo de 4 horas após a última miccção. Desprezar o primeiro jato de urina e sem interromper a miccção, coletar o jato médio. Não serão aceitas urinas coletadas durante 24 horas.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
 

Instruções  adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
 

Interpretação
INTERPRETAÇÃO
A Cultura de BAAR é um método de elevada especificidade e sensibilidade ao diagnóstico da tuberculose. Nos casos pulmonares com baciloscopia negativo, a cultura do escarro pode aumentar em até 30% o diagnóstico bacteriológico da doença. O resultado da cultura confirma o diagnóstico de micobacteriose, sendo necessária  aidentificação de espécie para caracterizar se é um caso de TB ou outra micobactéria.
DOENÇAS RELACIONADAS
Tuberculose
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