Instruções
Data revisão: 01/01/1900 00:00:00
ASPIRADO OU LAVADO GÁSTRICO
Instruções de preparo
Preparo Aspirado ou Lavado Gástrico CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.
Instruções de coleta
Coleta Aspirado ou Lavado Gástrico CUBAR:
Recomendações:
1. Ambos os procedimentos requerem equipe médica especializada.
2. Manuseio e transporte adequados são essenciais para preservar a integridade das amostras.
Instruções de coleta:
Aspirado:
1. Evitar a utilização de substâncias anestésicas (possibilidade de inibir o crescimento bacteriano.
2. Coletar o maior volume possível em recipiente estéril cerca de 5 a 10 ml.
3. Equipe médica especializada responsável pela coleta.
4. Coletar em frasco estéril, encaminhar o frasco ao laboratório bem vedado.
Lavado Gástrico
1. Requer hospitalização.
2. Jejum de 8 a 10 horas
3. Coleta realizada logo após o paciente acordar, antes do paciente comer.
4. Sonda nasogástrica fina utilizada para induzir escarro.
5. Injeção de 10-15ml de solução fisiológica.
6. Lavagem gástrica após 30 minutos.
7. Coletar pelo menos duas amostras em dias consecutivos.
8. Acondicionar o material em frasco estéril, encaminhar o frasco ao laboratório bem vedado.
Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
Instruções adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
ESCARRO
Instruções de preparo
Preparo Escarro CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.
Instruções de coleta
Coleta Escarro CUBAR:
Instruções de coleta:
1.Colher, preferencialmente, a primeira amostra da manhã.
2. Instruir o paciente a lavar bem a boca.
3. Realizar o procedimento de coleta em local arejado.
4. Abrir o frasco, e instruir o paciente a inspirar profundamente para forçar a tosse.
5. Prender a respiração, e escarrar no pote plástico até obter 3 eliminações de escarro, cerca de 5 a 10ml de amostra.
6. O frasco plástico deve ser estéril conter tampa de rosca e boca larga.
Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 48 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
Instruções adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
ESCARRO INDUZIDO
Instruções de preparo
Preparo Escarro Induzido CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.
Instruções de coleta
Coleta Escarro Induzido CUBAR:
Instruções de coleta:
1. Realizar nebulização com 5ml de solução salina de cloreto de sódio (NaCl) hipertônica a 3%.
2. Duração: 5-20 minutos, preferencialmente com nebulizador ultrassônico.
3. A nebulização provoca irritação e acaba induzindo tosse e expulsão do escarro.
4. Sinalizar no frasco que a amostra é de indução, pois o material é menos viscoso e semelhante a saliva e pode levar a rejeição da amostra devido à ausência de sinalização.
5. O frasco plástico deve ser estéril conter tampa de rosca e boca larga.
Observações:
1. Procedimento indicado para pacientes com pouca secreção ou com incapacidade de coletar escarro normalmente.
2. Realizar o procedimento em Unidade de saúde equipada com sala especial e cuidados de biossegurança para prevenção de contaminação ambiental por aerossóis.
Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 48 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
Instruções adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
FEZES
Instruções de preparo
Preparo Fezes CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.
Instruções de coleta
Coleta Fezes CUBAR:
Instruções de coleta:
1. Realizar a coleta do material em frasco estéril sem adição de conservantes.
2. Coletar material antes de qualquer medicação.
3. Coletar no mínimo 1g do material.
4. O frasco plástico deve ser estéril conter tampa de rosca e boca larga.
Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
Instruções adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
FRAGMENTOS DE TECIDO, BIÓPSIAS
Instruções de preparo
Preparo Fragmento de Tecido, Biópsias CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.
Instruções de coleta
Coleta Fragmento de Tecido, Biópsias CUBAR:
Instruções de coleta:
1. Procedimento realizado sob orientação médica.
2. Usar solução fisiológica ou água destilada em frasco estéril, o suficiente para garantir a umidade da amostra.
3. A amostra não deve ser submersa na solução.
4. Coletar cerca de 1 g de tecido profundo.
5. Após a coleta, acondicionar o material em frasco estéril.
Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
Instruções adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
LAVADO BRONCOALVEOLAR
Instruções de preparo
Preparo Lavado Broncoalveolar CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.
Instruções de coleta
Coleta Lavado Broncoalveolar CUBAR:
Instruções de coleta:
1. Realizar a coletado durante exploração broncoscópica.
2. Necessário equipe médica especializada.
3. Esterilizar o broncofibroscópio conforme indicação do fabricante antes de iniciar o procedimento.
4. Evitar a utilização de substância anestésica por inibir o crescimento bacteriano.
5. Coletar o maior volume possível em recipiente estéril cerca de 5 a 10 ml de material.
6. Após a coleta, acondicionar em fraco estéril e bem fechado.
Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
Instruções adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
LÍQUIDOS ORGÂNICOS
Instruções de preparo
Preparo Líquidos Orgânicos CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.
Instruções de coleta
Coleta Líquidos Orgânicos CUBAR:
Instruções de coleta:
1. Necessário equipe médica especializada, para realizar a coleta.
2. Realizar punção por via percutânea ou cirúrgica.
3. Não fazer uso de conservantes ou fixadores.
4. Utilizar frasco estéril com capacidade mínima de 10 ml.
5. Coletar o maior volume possível, sendo no mínimo 2 ml de material.
6. Encaminhar o frasco estéril ao laboratório bem fechado.
Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
Instruções adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
LÍQUOR
Instruções de preparo
Preparo Líquor CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.
Instruções de coleta
Coleta Líquor CUBAR:
Amostra coletada através de procedimento médico. Realizar coleta utilizando material e meio de coleta adequados e acondicionar corretamente. O ideal é que seja coletado 5mL de líquor, com um volume mínimo de 2mL, destinado especificamente para pesquisa e cultura de micobactérias (volumes menores comprometem a sensibilidade da baciloscopia, pois as amostras de líquor são paucibacilares).
Instruções de distribuição
Transportar em temperatura ambiente.
Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas em temperatura ambiente.
Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
Instruções adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
MEDULA ÓSSEA
Instruções de preparo
Preparo Medula Óssea CUBAR:
Jejum: De acordo com a orientação médica.
Medicação: De acordo com a orientação médica.
Todas as amostras devem vir em frasco estéril com conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos. Cadastrar exame de acordo com a sequência da coleta da amostra (exemplo: 1ª amostra - CUBA1; 2ª amostra - CUBA2; 3ª amostra - CUBA3, 4ª amostra - CUBA4 e 5ª amostra CUBA5).
Instruções de coleta
Coleta Medula Óssea CUBAR:
Instruções de coleta:
1. Realizar o aspirado da medula por uma equipe médica.
2. Coletar punção venosa com anticoagulante (SPS). Não utilizar EDTA.
3. Realizar a coleta diretamente no frasco de hemocultura automatizado (preferencialmente em frasco específico para micobactérias).
4. Quando não houver disponibilidade de frasco de hemocultura, coletar punção venosa com anticoagulante (SPS). Nunca utilizar EDTA. Inocular o sangue em tubo estéril.
NOTA: Para cultura de micobactérias em sangue ou medula óssea em frasco de hemocultura automatizado, utilizar o mnemônico específico HMCBK (HEMOCULTURA AUTOMATIZADA PARA MICOBACTÉRIAS).
Instruções de distribuição
Transportar em temperatura ambiente.
Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas em temperatura ambiente.
Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
Instruções adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
SANGUE
Instruções de preparo
Preparo Sangue CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.
Instruções de coleta
Coleta Sangue CUBAR:
Coletar em frasco de hemocultura específico para cultura de micobactérias seguindo o volume recomendado pelo fabricante.
Instruções de distribuição
Transportar em temperatura ambiente.
Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas em temperatura ambiente.
Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
Instruções adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
SECREÇÕES, ASPIRADO DE GÂNGLIOS
Instruções de preparo
Preparo Secreções, Aspirado de Gânglios CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.
Instruções de coleta
Coletar com seringa e agulha e transferir para o frasco estéril ou enviar na seringa sem agulha com ponta vedada.
Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
Instruções adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.
URINA AMOSTRA ISOLADA
Instruções de preparo
Preparo Urina Amostra Isolada CUBAR:
Jejum: De acordo com orientação médica.
Medicação: De acordo com orientação médica.
Outros: Todas as amostras devem vir em frasco estéril sem conservantes, obedecendo o volume mínimo, identificação do paciente, região de coleta informada, frasco bem fechado para que não ocorra vazamentos.
Instruções de coleta
Coleta Urina Amostra Isolada CUBAR:
Instruções de coleta:
1. Realizar higienização com água e sabão neutro.
2. Coletar o material em frasco estéril com tampa de rosca e boca larga, com capacidade mínima de 40 ml.
3. Coletar toda a urina da 1ª micção da manhã.
4. Garantir que o frasco esteja bem fechado.
5. Não encaminhar urina coletada durante 24 horas.
Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
Instruções adicionais
Data de revisão: 29/06/2021.