O Exame
CUBAR - CULTURA - BAAR
SINÔNIMOS: CULTURA DE BAAR, CULTURA DE BK, CULTURA PARA TUBERCULOSE, CULTURA PARA MYCOBACTERIUM
CBHPM: 40310159 CID10: A15
Cobertura
Produção do Exame
Produção do exame
MATERIAL
DIVERSOS
MEIO(S) DE COLETA
Frasco estéril
PRAZO
45 dias úteis
REALIZAÇÃO
Segunda a sábado
VOLUME MÍNIMO
Líquidos: 5 a 10 mL. Não líquidos: não aplicável
Método
MÉTODO
PETROFF (NAOH) + MEIO DE LOWENSTEIN JENSEN
Formulário
FORMULÁRIO OBRIGATÓRIO
 RQ-0698 DEVOLUÇÃO DE AMOSTRA BIOLÓGICA TERMO DE SOLICITAÇÃO

Instruções
Instruções
Data revisão: 01/01/1900 00:00:00
ASPIRADO OU LAVADO GÁSTRICO
Instruções de preparo
Preparo CUBAR:
Jejum: De acordo com a orientação médica.
Medicação: De acordo com a orientação médica.
Outros: Cadastrar exame de acordo com a sequência da coleta da amostra (exemplo: 1ª amostra - CUBA1; 2ª amostra - CUBA2; 3ª amostra - CUBA3, 4ª amostra - CUBA4 e 5ª amostra CUBA5).

NOTA: Região de coleta corresponde ao sítio anatômico de onde a amostra foi coletada

Instruções de coleta
Coleta Aspirado ou Lavado Gástrico CUBAR:
Recomendações:
1. Ambos os procedimentos requerem equipe médica especializada.
2. Manuseio e transporte adequados são essenciais para preservar a integridade das amostras.
Instruções de coleta: 
Aspirado:
1. Evitar a utilização de substâncias anestésicas (possibilidade de inibir o crescimento bacteriano.
2. Coletar o maior volume possível em recipiente estéril cerca de 5 a 10 ml. 
3. Equipe médica especializada responsável pela coleta.
4. Coletar em frasco estéril, encaminhar o frasco ao laboratório bem vedado.

Lavado Gástrico
1. Requer hospitalização.
2. Jejum de 8 a 10 horas
3. Coleta realizada logo após o paciente acordar, antes do paciente comer.
4. Sonda nasogástrica fina utilizada para induzir escarro.
5. Injeção de 10-15ml de solução fisiológica.
6. Lavagem gástrica após 30 minutos.
7. Coletar pelo menos duas amostras em dias consecutivos.
8. Acondicionar o material em frasco estéril, encaminhar o frasco ao laboratório bem vedado.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.
 Rejeição CUBAR:
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.

1. Amostras recebidas em frascos não estéreis.
2. Amostras envidas em frasco contendo conservantes.
3. Amostras sem identificação da região de coleta (sítio anatômico)
4. Amostras fora dos limites de temperatura. 
5. Amostras vazadas ou frascos danificados. 
6. Amostras com problemas de identificação.
7. Amostras com volume insuficiente.
8. Amostras salivares sem estarem devidamente sinalizadas como escarro induzido no frasco.
9. Amostras duplicadas sem solicitação de novo pedido.
10.Biópsias encaminhadas em formol, conservantes ou fixadores. 
11.Urina coletada durante 24 horas.
12. Amostras encaminhadas em seringa com agulha.

Instruções  adicionais
Data de revisão: 04/02/2025.
 

ESCARRO
Instruções de preparo
Preparo CUBAR:
Jejum: De acordo com a orientação médica.
Medicação: De acordo com a orientação médica.
Outros: Cadastrar exame de acordo com a sequência da coleta da amostra (exemplo: 1ª amostra - CUBA1; 2ª amostra - CUBA2; 3ª amostra - CUBA3, 4ª amostra - CUBA4 e 5ª amostra CUBA5).

NOTA: Região de coleta corresponde ao sítio anatômico de onde a amostra foi coletada

Instruções de coleta
Coleta Escarro CUBAR:
Instruções de coleta:
1.Colher, preferencialmente, a primeira amostra da manhã.
2. Instruir o paciente a lavar bem a boca.
3. Realizar o procedimento de coleta em local arejado.
4. Abrir o frasco, e instruir o paciente a inspirar profundamente para forçar a tosse.
5. Prender a respiração, e escarrar no pote plástico até obter 3 eliminações de escarro, cerca de 5 a 10ml de amostra.
6. O frasco plástico deve ser estéril conter tampa de rosca e boca larga.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 48 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Rejeição CUBAR:
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.

1. Amostras recebidas em frascos não estéreis.
2. Amostras envidas em frasco contendo conservantes.
3. Amostras sem identificação da região de coleta (sítio anatômico)
4. Amostras fora dos limites de temperatura. 
5. Amostras vazadas ou frascos danificados. 
6. Amostras com problemas de identificação.
7. Amostras com volume insuficiente.
8. Amostras salivares sem estarem devidamente sinalizadas como escarro induzido no frasco.
9. Amostras duplicadas sem solicitação de novo pedido.
10.Biópsias encaminhadas em formol, conservantes ou fixadores. 
11.Urina coletada durante 24 horas.
12. Amostras encaminhadas em seringa com agulha.

Instruções  adicionais
Data de revisão: 04/02/2025.
 

ESCARRO INDUZIDO
Instruções de preparo
Preparo CUBAR:
Jejum: De acordo com a orientação médica.
Medicação: De acordo com a orientação médica.
Outros: Cadastrar exame de acordo com a sequência da coleta da amostra (exemplo: 1ª amostra - CUBA1; 2ª amostra - CUBA2; 3ª amostra - CUBA3, 4ª amostra - CUBA4 e 5ª amostra CUBA5).

NOTA: Região de coleta corresponde ao sítio anatômico de onde a amostra foi coletada

Instruções de coleta
Coleta Escarro Induzido CUBAR:
Instruções de coleta:
1. Realizar nebulização com 5ml de solução salina de cloreto de sódio (NaCl) hipertônica a 3%.
2. Duração: 5-20 minutos, preferencialmente com nebulizador ultrassônico.
3. A nebulização provoca irritação e acaba induzindo tosse e expulsão do escarro.
4. Sinalizar no frasco que a amostra é de indução, pois o material é menos viscoso e semelhante a saliva e pode levar a rejeição da amostra devido à ausência de sinalização.
5. O frasco plástico deve ser estéril conter tampa de rosca e boca larga.
Observações: 
1. Procedimento indicado para pacientes com pouca secreção ou com incapacidade de coletar escarro normalmente.
2. Realizar o procedimento em Unidade de saúde equipada com sala especial e cuidados de biossegurança para prevenção de contaminação ambiental por aerossóis.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 48 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Rejeição CUBAR:
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.

1. Amostras recebidas em frascos não estéreis.
2. Amostras envidas em frasco contendo conservantes.
3. Amostras sem identificação da região de coleta (sítio anatômico)
4. Amostras fora dos limites de temperatura. 
5. Amostras vazadas ou frascos danificados. 
6. Amostras com problemas de identificação.
7. Amostras com volume insuficiente.
8. Amostras salivares sem estarem devidamente sinalizadas como escarro induzido no frasco.
9. Amostras duplicadas sem solicitação de novo pedido.
10.Biópsias encaminhadas em formol, conservantes ou fixadores. 
11.Urina coletada durante 24 horas.
12. Amostras encaminhadas em seringa com agulha.

Instruções  adicionais
Data de revisão: 04/02/2025.
 

FEZES
Instruções de preparo
Preparo CUBAR:
Jejum: De acordo com a orientação médica.
Medicação: De acordo com a orientação médica.
Outros: Cadastrar exame de acordo com a sequência da coleta da amostra (exemplo: 1ª amostra - CUBA1; 2ª amostra - CUBA2; 3ª amostra - CUBA3, 4ª amostra - CUBA4 e 5ª amostra CUBA5).

NOTA: Região de coleta corresponde ao sítio anatômico de onde a amostra foi coletada

Instruções de coleta
Coleta Fezes CUBAR:
Instruções de coleta:
1. Realizar a coleta do material em frasco estéril sem adição de conservantes.
2. Coletar material antes de qualquer medicação. 
3. Coletar no mínimo 1g do material.
4. O frasco plástico deve ser estéril conter tampa de rosca e boca larga.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Rejeição CUBAR:
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.

1. Amostras recebidas em frascos não estéreis.
2. Amostras envidas em frasco contendo conservantes.
3. Amostras sem identificação da região de coleta (sítio anatômico)
4. Amostras fora dos limites de temperatura. 
5. Amostras vazadas ou frascos danificados. 
6. Amostras com problemas de identificação.
7. Amostras com volume insuficiente.
8. Amostras salivares sem estarem devidamente sinalizadas como escarro induzido no frasco.
9. Amostras duplicadas sem solicitação de novo pedido.
10.Biópsias encaminhadas em formol, conservantes ou fixadores. 
11.Urina coletada durante 24 horas.
12. Amostras encaminhadas em seringa com agulha.

Instruções  adicionais
Data de revisão: 04/02/2025.
 

FRAGMENTOS DE TECIDO, BIÓPSIAS
Instruções de preparo
Preparo CUBAR:
Jejum: De acordo com a orientação médica.
Medicação: De acordo com a orientação médica.
Outros: Cadastrar exame de acordo com a sequência da coleta da amostra (exemplo: 1ª amostra - CUBA1; 2ª amostra - CUBA2; 3ª amostra - CUBA3, 4ª amostra - CUBA4 e 5ª amostra CUBA5).

NOTA: Região de coleta corresponde ao sítio anatômico de onde a amostra foi coletada

Instruções de coleta
Coleta Fragmento de Tecido, Biópsias CUBAR:
Instruções de coleta:
1. Procedimento realizado sob orientação médica.
2. Usar solução fisiológica ou água destilada em frasco estéril, o suficiente para garantir a umidade da amostra.
3. A amostra não deve ser submersa na solução.
4. Coletar cerca de 1 g de tecido profundo.
5. Após a coleta, acondicionar o material em frasco estéril.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Rejeição CUBAR:
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.

1. Amostras recebidas em frascos não estéreis.
2. Amostras envidas em frasco contendo conservantes.
3. Amostras sem identificação da região de coleta (sítio anatômico)
4. Amostras fora dos limites de temperatura. 
5. Amostras vazadas ou frascos danificados. 
6. Amostras com problemas de identificação.
7. Amostras com volume insuficiente.
8. Amostras salivares sem estarem devidamente sinalizadas como escarro induzido no frasco.
9. Amostras duplicadas sem solicitação de novo pedido.
10.Biópsias encaminhadas em formol, conservantes ou fixadores. 
11.Urina coletada durante 24 horas.
12. Amostras encaminhadas em seringa com agulha.

Instruções  adicionais
Data de revisão: 04/02/2025.
 

LAVADO BRONCOALVEOLAR
Instruções de preparo
Preparo CUBAR:
Jejum: De acordo com a orientação médica.
Medicação: De acordo com a orientação médica.
Outros: Cadastrar exame de acordo com a sequência da coleta da amostra (exemplo: 1ª amostra - CUBA1; 2ª amostra - CUBA2; 3ª amostra - CUBA3, 4ª amostra - CUBA4 e 5ª amostra CUBA5).

NOTA: Região de coleta corresponde ao sítio anatômico de onde a amostra foi coletada

Instruções de coleta
Coleta Lavado Broncoalveolar CUBAR:
Instruções de coleta:
1. Realizar a coletado durante exploração broncoscópica.
2. Necessário equipe médica especializada.
3. Esterilizar o broncofibroscópio conforme indicação do fabricante antes de iniciar o procedimento.
4. Evitar a utilização de substância anestésica por inibir o crescimento bacteriano.
5. Coletar o maior volume possível em recipiente estéril cerca de 5 a 10 ml de material.
6. Após a coleta, acondicionar em fraco estéril e bem fechado.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Rejeição CUBAR:
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.

1. Amostras recebidas em frascos não estéreis.
2. Amostras envidas em frasco contendo conservantes.
3. Amostras sem identificação da região de coleta (sítio anatômico)
4. Amostras fora dos limites de temperatura. 
5. Amostras vazadas ou frascos danificados. 
6. Amostras com problemas de identificação.
7. Amostras com volume insuficiente.
8. Amostras salivares sem estarem devidamente sinalizadas como escarro induzido no frasco.
9. Amostras duplicadas sem solicitação de novo pedido.
10.Biópsias encaminhadas em formol, conservantes ou fixadores. 
11.Urina coletada durante 24 horas.
12. Amostras encaminhadas em seringa com agulha.

Instruções  adicionais
Data de revisão: 04/02/2025.
 

LÍQUIDOS ORGÂNICOS
Instruções de preparo
Preparo CUBAR:
Jejum: De acordo com a orientação médica.
Medicação: De acordo com a orientação médica.
Outros: Cadastrar exame de acordo com a sequência da coleta da amostra (exemplo: 1ª amostra - CUBA1; 2ª amostra - CUBA2; 3ª amostra - CUBA3, 4ª amostra - CUBA4 e 5ª amostra CUBA5).

NOTA: Região de coleta corresponde ao sítio anatômico de onde a amostra foi coletada

Instruções de coleta
Coleta Líquidos Orgânicos CUBAR:
Instruções de coleta:  
1. Necessário equipe médica especializada, para realizar a coleta.
2. Realizar punção por via percutânea ou cirúrgica.
3. Não fazer uso de conservantes ou fixadores.
4. Utilizar frasco estéril com capacidade mínima de 10 ml.
5. Coletar o maior volume possível, sendo no mínimo 2 ml de material.
6. Encaminhar o frasco estéril ao laboratório bem fechado.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Rejeição CUBAR:
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.

1. Amostras recebidas em frascos não estéreis.
2. Amostras envidas em frasco contendo conservantes.
3. Amostras sem identificação da região de coleta (sítio anatômico)
4. Amostras fora dos limites de temperatura. 
5. Amostras vazadas ou frascos danificados. 
6. Amostras com problemas de identificação.
7. Amostras com volume insuficiente.
8. Amostras salivares sem estarem devidamente sinalizadas como escarro induzido no frasco.
9. Amostras duplicadas sem solicitação de novo pedido.
10.Biópsias encaminhadas em formol, conservantes ou fixadores. 
11.Urina coletada durante 24 horas.
12. Amostras encaminhadas em seringa com agulha.

Instruções  adicionais
Data de revisão: 04/02/2025.
 

LÍQUOR
Instruções de preparo
Preparo CUBAR:
Jejum: De acordo com a orientação médica.
Medicação: De acordo com a orientação médica.
Outros: Cadastrar exame de acordo com a sequência da coleta da amostra (exemplo: 1ª amostra - CUBA1; 2ª amostra - CUBA2; 3ª amostra - CUBA3, 4ª amostra - CUBA4 e 5ª amostra CUBA5).

NOTA: Região de coleta corresponde ao sítio anatômico de onde a amostra foi coletada

Instruções de coleta
Coleta Líquor CUBAR:
Amostra coletada através de procedimento médico. Realizar coleta utilizando material e meio de coleta adequados e acondicionar corretamente. O ideal é que seja coletado 5mL de líquor, com um volume mínimo de 2mL, destinado especificamente para pesquisa e cultura de micobactérias (volumes menores comprometem a sensibilidade da baciloscopia, pois as amostras de líquor são paucibacilares).

Instruções de distribuição
Transportar em temperatura ambiente.
 

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas em temperatura ambiente.
 

Instruções de rejeição
Rejeição CUBAR:
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.

1. Amostras recebidas em frascos não estéreis.
2. Amostras envidas em frasco contendo conservantes.
3. Amostras sem identificação da região de coleta (sítio anatômico)
4. Amostras fora dos limites de temperatura. 
5. Amostras vazadas ou frascos danificados. 
6. Amostras com problemas de identificação.
7. Amostras com volume insuficiente.
8. Amostras salivares sem estarem devidamente sinalizadas como escarro induzido no frasco.
9. Amostras duplicadas sem solicitação de novo pedido.
10.Biópsias encaminhadas em formol, conservantes ou fixadores. 
11.Urina coletada durante 24 horas.
12. Amostras encaminhadas em seringa com agulha.

Instruções  adicionais
Data de revisão: 04/02/2025.
 

SECREÇÃO TRAQUEAL
Instruções de preparo
Medicação: De acordo com orientação médica.
 Jejum: De acordo com a orientação médica.
 Preparo CUBAR:
Jejum: De acordo com a orientação médica.
Medicação: De acordo com a orientação médica.
Outros: Cadastrar exame de acordo com a sequência da coleta da amostra (exemplo: 1ª amostra - CUBA1; 2ª amostra - CUBA2; 3ª amostra - CUBA3, 4ª amostra - CUBA4 e 5ª amostra CUBA5).

NOTA: Região de coleta corresponde ao sítio anatômico de onde a amostra foi coletada

Instruções de coleta
Coleta secreção traqueal CUBAR:
Instruções de coleta:  
1. A amostra deve ser obtida por meio de sonda de aspiração em pacientes intubados e em uso de aparelhos de respiração mecânica.
2. A coleta deve ser realizada em frasco estéril acoplado a um sistema de sucção.
3. O frasco deve ser bem fechado e identificado com os dados paciente.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado 2°C a 8°C.
 

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Rejeição CUBAR:
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.

1. Amostras recebidas em frascos não estéreis.
2. Amostras envidas em frasco contendo conservantes.
3. Amostras sem identificação da região de coleta (sítio anatômico)
4. Amostras fora dos limites de temperatura. 
5. Amostras vazadas ou frascos danificados. 
6. Amostras com problemas de identificação.
7. Amostras com volume insuficiente.
8. Amostras salivares sem estarem devidamente sinalizadas como escarro induzido no frasco.
9. Amostras duplicadas sem solicitação de novo pedido.
10.Biópsias encaminhadas em formol, conservantes ou fixadores. 
11.Urina coletada durante 24 horas.
12. Amostras encaminhadas em seringa com agulha.

Instruções  adicionais
Data de revisão: 04/02/2025.
 

SECREÇÕES, ASPIRADO DE GÂNGLIOS
Instruções de preparo
Preparo CUBAR:
Jejum: De acordo com a orientação médica.
Medicação: De acordo com a orientação médica.
Outros: Cadastrar exame de acordo com a sequência da coleta da amostra (exemplo: 1ª amostra - CUBA1; 2ª amostra - CUBA2; 3ª amostra - CUBA3, 4ª amostra - CUBA4 e 5ª amostra CUBA5).

NOTA: Região de coleta corresponde ao sítio anatômico de onde a amostra foi coletada

Instruções de coleta
Coleta secreções e aspirado de gânglios CUBAR:
Instruções de coleta:  
Cavidades fechadas: 
1. Realizar a coleta por punção.
2. Utilizar seringa e agulha para coletar o material. 
3. Após a coleta, descartar a agulha e bloquear a ponta da seringa. 
4. Encaminhar a própria seringa ao laboratório sem agulha e com a ponta bloqueada.
Em cavidades abertas e secreções de lesões cutâneas:
1. Coletar com swab, mantendo distância das bordas da lesão e coletando sempre a maior quantidade possível de secreção.
2. Imergir a ponta do swab com a amostra em 2-3 mL de solução fisiológica ou água destilada estéreis, fazendo uma suspensão do material.
3. Acondicionar em frasco ou tubo estéril e encaminhar ao laboratório. Nunca utilizar meios de transporte em gel.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Rejeição CUBAR:
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.

1. Amostras recebidas em frascos não estéreis.
2. Amostras envidas em frasco contendo conservantes.
3. Amostras sem identificação da região de coleta (sítio anatômico)
4. Amostras fora dos limites de temperatura. 
5. Amostras vazadas ou frascos danificados. 
6. Amostras com problemas de identificação.
7. Amostras com volume insuficiente.
8. Amostras salivares sem estarem devidamente sinalizadas como escarro induzido no frasco.
9. Amostras duplicadas sem solicitação de novo pedido.
10.Biópsias encaminhadas em formol, conservantes ou fixadores. 
11.Urina coletada durante 24 horas.
12. Amostras encaminhadas em seringa com agulha.

Instruções  adicionais
Data de revisão: 04/02/2025.
 

URINA AMOSTRA ISOLADA
Instruções de preparo
Preparo CUBAR:
Jejum: De acordo com a orientação médica.
Medicação: De acordo com a orientação médica.
Outros: Cadastrar exame de acordo com a sequência da coleta da amostra (exemplo: 1ª amostra - CUBA1; 2ª amostra - CUBA2; 3ª amostra - CUBA3, 4ª amostra - CUBA4 e 5ª amostra CUBA5).

NOTA: Região de coleta corresponde ao sítio anatômico de onde a amostra foi coletada

Instruções de coleta
Coleta Urina Amostra Isolada CUBAR:
Instruções de coleta:  
1. Realizar higienização com água e sabão neutro. 
2. Coletar o material em frasco estéril com tampa de rosca e boca larga, com capacidade mínima de 40 ml.
3. Coletar toda a urina da 1ª micção da manhã.
4. Garantir que o frasco esteja bem fechado.
5. Não encaminhar urina coletada durante 24 horas.

Instruções de distribuição
Transportar refrigerado (2°C a 8°C).
  

Instruções de estabilidade
A amostra é estável por até 24 horas refrigerada de 2°C a 8°C.
 

Instruções de rejeição
Rejeição CUBAR:
Amostras recebidas diferente das condições solicitadas em guia.

1. Amostras recebidas em frascos não estéreis.
2. Amostras envidas em frasco contendo conservantes.
3. Amostras sem identificação da região de coleta (sítio anatômico)
4. Amostras fora dos limites de temperatura. 
5. Amostras vazadas ou frascos danificados. 
6. Amostras com problemas de identificação.
7. Amostras com volume insuficiente.
8. Amostras salivares sem estarem devidamente sinalizadas como escarro induzido no frasco.
9. Amostras duplicadas sem solicitação de novo pedido.
10.Biópsias encaminhadas em formol, conservantes ou fixadores. 
11.Urina coletada durante 24 horas.
12. Amostras encaminhadas em seringa com agulha.

Instruções  adicionais
Data de revisão: 04/02/2025.
 

Interpretação
INTERPRETAÇÃO
A Cultura de BAAR é um método de elevada especificidade e sensibilidade ao diagnóstico da tuberculose.
O diagnóstico laboratorial de micobactérias pode ser realizado a partir de amostras provenientes de diferentes sítios anatômicos. No caso específico da tuberculose (TB), a escolha das amostras varia conforme a forma clínica da doença, seja pulmonar ou extrapulmonar. Para TB pulmonar, especialmente em casos com baciloscopia negativa, a cultura do escarro pode aumentar a detecção bacteriológica em até 30%, contribuindo significativamente para a precisão diagnóstica.
A cultura de BAAR é considerada positiva quando ocorrer o desenvolvimento de microrganismos característicos confirmados pela técnica de coloração de Ziehl-Neelsen. Já a ausência de crescimento em meio de cultura seletivo e diferencial após 45 dias de incubação, equivale a um resultado negativo.
DOENÇAS RELACIONADAS
Tuberculose
LIMITAÇÕES DO EXAME
Para cultura de micobactérias em sangue utilizar o mnemônico específico HMCBK (HEMOCULTURA AUTOMATIZADA PARA MICOBACTÉRIAS).
Outras Informações
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